目的探索川麥冬鬚根普通粉和超細微粉間表面特性和溶出性的差異，以便更好地利用川麥冬鬚根資源。方法通過普通光學顯微鏡、電子顯微鏡對普通粉和超細微粉的形態學觀察，通過對粒徑、分佈寬度、比表面積、鬆密度、壓縮度及其浸出物測定等方法對其普通粉和超細微粉進行比較分析。下面是小編蒐集整理的相關內容的論文，歡迎大家閱讀參考。
【摘要】 目的首次提取柳茶中的水溶性粗多糖並進行分離、純化及組成分析。方法柳茶經熱水提取、乙醇沉澱、Sevag法去蛋白、H2O2脫色，逆向流水透析得多糖精製品。將精多糖衍生化後運用氣相色譜-質譜法對其化學成分進行分析。結果確定了柳茶中水溶性多糖分別由核糖、甘露糖、葡萄糖和半乳糖組成，其中以核糖、葡糖糖、半乳糖為主。結論該方法簡便、靈敏，可以準確測定出柳茶多糖中所含有的各種單糖。
【關鍵詞】 柳茶多糖; 純化; 氣相色譜-質譜; 單糖
柳茶為藏族民間常用藥，以薔薇科(Rosaceae)鮮卑花屬(Sibiraea)植物窄葉鮮卑花Sibiraea angustata (Rehd.) Hand-Mazz. 和鮮卑花Sibiraea laecigata (L) Maxim.的枝葉及果序(帶果實的果枝)入藥，主要用於消食導滯、疏散風熱;據藏藥文獻記載，柳茶主治熱病和疫病[1]。現藏族民間常作茶飲，治療食後腹脹等諸多原因引起的消化不良，每每見效。柳茶中除含有揮發油、微量元素外，通過實驗發現還含有豐富的多糖。多糖作為提高機體免疫功能的保健品已被許多人接受，但許多多糖產品僅僅停留在保健品階段，未能開發成藥物，主要原因是多糖的分離純化困難，技術不過關。因此本文旨在對柳茶多糖的提取、純化、組分分析進行研究並對其營養保健功能進行探討，以期為柳茶的開發及其綜合利用提供參考。
一、儀器與材料
1.1 儀器 UV-2450紫外分光光度計(日本島津) ; NE2155電子天平(德國賽多利斯儀器公司);Agilent 5793I-6890氣相色譜-質譜聯用儀(GC-MS);SE-54彈性石英毛細管柱(50 m×0.25 mm id×0.50 μm);高純氦(純度≥99.999%);旋轉蒸發儀(上海青浦瀘西儀器廠)。
1.2 材料 鮮卑花屬植物葉採自甘肅省甘南藏族自治州合作市郊，海拔3 200 m以上。經蘭州大學藥學院生藥學研究所楊永建教授鑑定其為薔薇科(Rosaceae)鮮卑花屬(Sibiraea)植物窄葉鮮卑花Sibiraea angustata (Rehd.) Hand-Mazz. 和鮮卑花Sibiraea laecigata (L) Maxim.的葉。
單糖標準品葡糖糖、阿拉伯糖、核糖、甘露糖、木糖、果糖、半乳糖標準品 (Fluka公司)，鹽酸羥胺、吡啶、三氟乙酸、乙酸酐、氯仿以及其他試劑等均為國產分析純，蒸餾水為實驗室自制。
二、方法
2.1 多糖的提取與純化
2.1.1 粗多糖的提取取一定量的柳茶依次用石油醚、乙醚除去脂溶性雜質。加10倍量的水90～100℃提取3次，3 h/次，合併水提液，過濾。70℃水浴減壓濃縮至適量，加入5倍量95 %的乙醇純析，靜置過夜，離心過濾，置真空冷凍乾燥得柳茶多糖粗品。
2.1.2 粗多糖純化[2]將多糖粗品溶於蒸餾水，去不溶物，按Sevag法(氯仿∶正丁醇=4∶1)脫蛋白，重複10次以上，然後移至透析袋中用去離子水逆流透析24 h，直至紫外光譜分析檢測無蛋白吸收。以氨水調節pH為8，滴加H2O2，50℃保溫脫色2 h，減壓濃縮，加入5倍量的無水乙醇，靜置過夜，離心收集沉澱，將沉澱依次用無水乙醇、丙酮、乙醚漂洗2次，冷凍乾燥得去蛋白多糖純品。
2.1.3 紫外光譜分析 取柳茶多糖適量，加水溶解，配製成濃度為1.0 g/L的多糖水溶液，採用紫外可見分光光度法190～700 nm範圍內掃描。光譜顯示柳茶多糖具有多糖特徵性的'紫外吸收圖譜僅在200 nm處有一銳細吸收峰，大於250 nm無明顯的紫外吸收，是平坦的背景。結果表明，提取純化的多糖中不含有核酸、蛋白質以及其他雜質成分。
2.2 柳茶多糖的氣相色譜質譜測定
2.2.1 供試品溶液(糖腈乙醯酯衍生物)的製備稱取20 mg柳茶純化多糖樣品溶於2 ml 2 mo1/L的TFA中，封管，於100℃水解6 h，減壓除盡TFA。在水解產物中加入20 mg鹽酸羥胺和1 ml吡啶，封管於90℃反應30 min。冷至室溫，再加入1 ml乙酸酐，封管於90℃反應30 min，冷卻後轉出上層清液，減壓濃縮至幹。滴入0.5 ml氯仿溶解後進行氣相色譜——質譜分析。
2.2.2 對照品溶液的製備精密稱取單糖標準品葡糖糖、阿拉伯糖、核糖、甘露糖、木糖、果糖、半乳糖對照品20 mg，採用上述方法制備乙醯化衍生物，氯仿溶解後進行氣相色譜—質譜分析。
2.3 GC-MS分析條件
2.3.1 色譜條件SE-54毛細管柱，氣化室溫度270℃，柱前壓17.8 kPa，分流比30∶1，採用恆流模式載氣He流量1.2 ml/min，進樣量1 μl，程序升溫：起始溫度100℃保持6 min，以20℃/ min 升至220℃保持14 min，以5℃/ min 升至290℃。
2.3.2 質譜條件電子轟擊源(EI)，電子能量70 eV ;離子源溫度：230℃;四極杆溫度：150℃;傳輸杆溫度：280℃;掃描範圍：14～400 amu。
三、結果
3.1 單糖標準品和柳茶多糖的GC—MS分析
3.1.1 混合單糖標準品乙醯化衍生物的總離子流圖見圖1。根據單糖標準品的乙醯化衍生物的GC-MS的總離子流圖，確定7種混合單糖標準品的GC一MS總離子流圖的出峰順序為果糖、核糖、阿拉伯糖、木糖、甘露糖、葡萄糖和半乳糖。
3.1.2 柳茶多糖的乙醯化衍生物的總離子流圖見圖2。根據柳茶多糖的總離子流圖，通過各峰的保留時間和標準質譜尼斯特譜庫(NIST)對照分析可以確定其含有核糖、甘露糖、葡萄糖和半乳糖，出峰時間及其組成含量見表1。
四、 討論
分析多糖中單糖組成，首要的工作就是將多糖樣品進行徹底的水解。因為如果水解效果不理想，多糖很難完全水解為單糖或者僅僅有很少部分水解，導致樣品水解衍生化產物在氣相色譜分析中峰值很小，從而影響多糖中含量較少的單糖測定。通過對影響水解效果的各種因素的綜合考察分析，得出對於柳茶多糖的水解應採用2 ml 2mo1/L的TFA水解6 h較為合適。在此水解條件下，可以使多糖較為完全地水解。而硫酸也可用於多糖的水解，但實驗時採用低濃度的硫酸水解時效果不理想，高濃度的硫酸則易造成多糖的碳化。且由於硫酸沸點比較高，水解後殘留的酸不容易揮發除去，必須用碳酸鋇中和處理，容易造成樣品組分的損失。
柳茶多糖中的單糖含量
柳茶多糖在空氣中提取或乾燥時顏色會加深，可用過氧化氫或活性炭脫色，活性炭在脫色時使用量大，樣品損失較多，故採用H2O2脫色。在用過氧化氫脫色處理後，一定要透析至無過氧化氫檢出，H2O2檢出用高錳酸鉀法。此外，在醇洗及醚洗、抽濾時用薄膜蓋住樣品，可減少空氣接觸，防止顏色加深。在脫色時50℃保溫脫色2 h，時間短色素太多影響檢測結果，時間長也沒有更好的脫色效果。
柳茶中除含有揮發油、微量元素、三萜類化合物等多種化學成分外，課題組發現其所含多糖也是其主要活性成分之一;多糖作為藥物應用是在20世紀40年代，自20世紀60年代以來，人們陸續發現多糖具有更多的生物活性。不僅具有免疫調節功能，還可以抗感染、降血糖和抗腫瘤等，隨著多糖類化合物研究的深入，其在抗腫瘤和病毒的臨床治療方面顯示了廣闊的應用前景。本文首次對柳茶多糖的化學組成進行研究，對開發利用本地資源有一定的意義。對其化學結構的進一步研究，將有利於闡明其活性與成分的關係。
【參考文獻】
[1] 甘肅省衛生局.甘肅中草藥手冊，第3冊[M].蘭州：甘肅人民出版社，1973：1554.
[2] 方積年,丁 侃.天然藥物-多糖的主要生物活性及分離純化方法[J].中國天然藥物,2007,95(5):338.